EFEITO DO PLASMA ATMOSFÉRICO A FRIO NA ADESÃO PLAQUETÁRIA EM SUPERFÍCIES DE TITÂNIO
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Abstract
A formação de coágulos em implantes ósseos produz fatores pró-angiogênicos criando um microam-biente adequado para que ocorra a osteogênese, garantindo o sucesso do implante ósseo. O objetivo deste trabalho foi avaliar o efeito do plasma atmosférico frio (CAP) em superfícies de titânio (Ti) na adesão e ativação plaquetária e no tempo de coagulação. Para isso, foram produzidos discos de titânio tratados por CAP durante 15 minutos na voltagem de 15Kv, frequência de 600Hz e 1 L/min de hélio. A topografia foi avaliada por microscopia de força atômica (AFM), a composição química por espec-troscopia de fotoelétrons de raios X (XPS) e a molhabilidade por teste de gota séssil. Foram coletados 30mL de sangue com citrato de sódio 3,2%. O plasma rico em plaquetas (PRP) foi obtido por centri-fugação a 1000 rpm por 5 min. O tempo de protrombina e tromboplastina parcial foram medidos usando um coagulômetro semiautomático. 800μL de PRP foram distribuídos sobre as amostras e incubados por 60 minutos a 37ºC em atmosfera úmida. Em seguida, as amostras foram lavadas com PBS para remoção de plaquetas não aderidas, fixadas e observadas em microscópio eletrônico de varredura (MEV) e analisadas no software ImageJ. A adesão plaquetária foi determinada pela distân-cia e número de plaquetas aderidas e ativadas. As amostras tratadas por CAP apresentaram maior ativação plaquetária, maior número de plaquetas na superfície e maior distância quando comparadas às polidas, o que resultou em menor tempo de coagulação proporcionando formação mais rápida de coágulos, frequentemente associado a maior biocompatibilidade do implante e melhor osseointegra-ção.
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References
Baseri, M., Radmand, F., Hamedi, R., Yousefi, M., & Kafil, H. S. (2020). Immunological Aspects of Dental Implant Rejection. BioMed Research International, 2020.
Bernhardt, T., Semmler, M. L., Schäfer, M., Bekeschus, S., Emmert, S., & Boeckmann, L. (2019). Plasma Medicine: Applications of Cold Atmospheric Pressure Plasma in Dermatology. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2019, 10–13. https://doi.org/10.1155/2019/3873928
Hudecki, A., Kiryczyński, G., & Łos, M. J. (2018). Biomaterials, definition, overview. In Stem Cells and Biomaterials for Regenerative Medicine (pp. 85–98). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-812258-7.00007-1
Junkar, I. (2016). Interaction of cells and platelets with biomaterial surfaces treated with gaseous plasma. In Advances in Biomembranes and Lipid Self-Assembly (Vol. 23, pp. 25–59). Elsevier B.V. https://doi.org/10.1016/bs.abl.2016.01.002
Kulkarni, M., Mazare, A., Gongadze, E., Perutkova, Kralj-Iglic, V., Milošev, I., Schmuki, P., Iglič, A., & Mozetič, M. (2015). Titanium nanostructures for biomedical applications. Nanotechnology, 26(6). https://doi.org/10.1088/0957-4484/26/6/062002
Nagata, M. J. H., Messora, M., Pola, N., Campos, N., Vieira, R., Esper, L. A., Sbrana, M., Fucini, S., Garcia, V., & Bosco, A. (2010). Influence of the ratio of particulate autogenous bone graft/platelet-rich plasma on bone healing in critical-size defects: a histologic and histometric study in rat calvaria. Journal of Orthopaedic Research : Official Publication of the Orthopaedic Research Society, 28(4), 468–473. https://doi.org/10.1002/JOR.21027
Raines, A. L., Olivares-Navarrete, R., Wieland, M., Cochran, D. L., Schwartz, Z., & Boyan, B. D. (2010). Regulation of angiogenesis during osseointegration by titanium surface microstructure and energy. Biomaterials, 31(18), 4909–4917. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2010.02.071
Ratner, B. D. (2013). Introduction: Biology and Medicine – Key Concepts in the Use of Biomaterials in Surgery and Medical Devices. Biomaterials Science: An Introduction to Materials: Third Edition, 393–394. https://doi.org/10.1016/B978-0-08-087780-8.00035-8
Rausch-fan, X., Qu, Z., Wieland, M., Matejka, M., & Schedle, A. (2008). Differentiation and cytokine synthesis of human alveolar osteoblasts compared to osteoblast-like cells (MG63) in response to titanium surfaces. Dental Materials : Official Publication of the Academy of Dental Materials, 24(1), 102–110. https://doi.org/10.1016/J.DENTAL.2007.03.001
Shiu, H. T., Goss, B., Lutton, C., Crawford, R., & Xiao, Y. (2014). Formation of blood clot on biomaterial implants influences bone healing. Tissue Engineering. Part B, Reviews, 20(6), 697–712. https://doi.org/10.1089/TEN.TEB.2013.0709
Tominami, K., Kanetaka, H., Sasaki, S., Mokudai, T., Kaneko, T., & Niwano, Y. (2017). Cold atmospheric plasma enhances osteoblast differentiation. PloS One, 12(7). https://doi.org/10.1371/JOURNAL.PONE.0180507
Yin, X., Yang, C., Wang, Z., Zhang, Y., Li, Y., Weng, J., & Feng, B. (2021). Alginate/chitosan modified immunomodulatory titanium implants for promoting osteogenesis in vitro and in vivo. Materials Science & Engineering. C, Materials for Biological Applications, 124. https://doi.org/10.1016/J.MSEC.2021.112087